Myriam Restrepo este es mi
aporte. Gracias.
LABORATORIO 3
PRODUCCION DE AMILASA POR MICROBIOS DEL SUELO
MATERIALES UTILIZADOS
1 g de tierra seca, diferentes tipos de suelo
9 ml de agua peptona da o solución salina
Cajas Petri 15 mm con nutriente de agar (0,2 de almidón
soluble)
Tubos de Ensayo
Erlenmeyers
Pipetas de vidrio
Solución de Yodo
PROCEDIMIENTO
1,086 G tierra + 9 ml de agua peptona 〖10〗^(-1) 〖10〗^(-2)
〖10〗^(-3)
〖10〗^(-4) 〖10〗^(-5) 〖10〗^(-6) 37 ºC por 24 hr+ 2,5 ml de lugol
A nuestro grupo le correspondió 〖10〗^(-5)
Se incubó a 30ºC 24 horas +solución de yodo para detectar la
presencia almidón
Número de colonias obtenidas. No se obtuvo ninguna colonia,
no coloración azul violeta para identificación de almidón ni roja para
identificación de glicógeno y dextrinas. La 〖10〗^(-4), fue la anterior si tuvo resultados.
POSIBLES CAUSAS POR LAS QUE NO SE OBTUVO RESULTADOS:
Es posible que las bacterias presentes en la muestra no
pudieran crecer debido a fallas en las condiciones de: pH, temperatura, medio
de cultivo, tiempo. En este caso pudo ser por error en el tiempo de incubación.
Por lo que el recuento fue nulo.
O Por un posible error en el procedimiento. Cada colonia se
forma a partir de por lo menos un microorganismo. Y en nuestro experimento no
se formó nada.
por el tipo de microorganismo, a temperatura óptima, tienen
tiempos de generación muy cortos otros crecen más lentamente con tiempos de
generación que necesitan de varias horas.
CONCLUSIONES
El suelo es la fuente más importante de microorganismos. Con
capacidad aminolítica, lipolítica, antimicrobiana y capacidad de síntesis de
melanina.
Los antibióticos son también un producto de las enzimas.
Cada organismo produce variedad de enzimas, las que están
participan en procesos celulares. Algunos microorganismos las producen en
cantidades más grandes y las excretan al medio.
Cada actividad enzimática le permite al microorganismo
competir contra otros microorganismos por nutrientes, por la capacidad de
degradación de compuestos.
CUANTIFICACIÓN DE AZÚCARES
E.Coli 10%
90%
Fructosa saca glucosa
a 37ºC
1ml
blanco (fructosa) REFRIGERAR 4ºc
0 60 90 120….300
Nuestro grupo trabajo con fructosa. Esperar 1 hr. Luego cada
½ hora.
Pasar lectura por espectofotometría calibrar 600nm con s/n
blanco
tiempo absorvancia
0 0,032
60 -0,05
90 0,091
120 0,036
150 -0,053
180 0,171
210 0,055
240 -0,045
270 -0,064
Y0= Y1+Y2+YN N= Numero de valores
N Y=Absorvancia
N=9
Y=0,173 (Suma de todas las absorvancia)
Hallamos desviación estándar:
σ = √1/N ∑_(i=0)^n▒〖(Yi-Yo〗)2
σ=√ 1/9 9 (0.032-0,2)
σ=√ 0,11111 9 (0.032-0,2)
σ=0,3333 9 (-0,168)
σ=0,3333 9 (-0,168)
σ= 2,9997(-0,168)
σ= -0,5039496
+ lugol (Diluir 1.2 ml) + 23 ml H20 Por goteo lento 5 min.
Se observò formación de colonias halo rojizo.
Nº Colonias / Diametro del halo
2/5mm = 0,4
EXTRACCION DE ADN
20 mul muestra + 480 mul H20 + Se calentó 5 min
Lectura 540 nm
CONCLUSIONES
Se observó que la temperatura incrementó tanto la producción
de fructosa, la temperatura condiciona la producción y liberación de enzima al
medio para la polimerización de dextrano.
Según los resultados encontrados en los ensayos preliminares
y en la fase final, se observó que el mejor sustrato acorde con las condiciones
nutricionales y con el cual se presentó un comportamiento.
BIBLIOGRAFIA
Universidad Nacional del Nordeste Trabajo Práctico Nº 5
FACULTAD DE AGROINDUSTRIAS Estudio cuantitativo de bacterias Microbiología
Farmacia Año 2006. Recuperado de:
http://www.biologia.edu.ar/microgeneral/tp5.pdf
Á. N. Ramona; R. P, Bernarda; H. M, Rómulo; C, Marluy.
“Contenido de azúcares totales, reductores y no reductores” Multiciencias, vol.
12, núm. 2, abril-junio, 2012, pp. 129-135 Universidad del Zulia. Recuperado
de:
http://www.redalyc.org/pdf/904/90424216002.pdf




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