INTRODUCCION
En esta práctica se permitió
la identificación de azucares sus diferencias por cepas de levadura observando estadísticamente la
producción del metabolito deseado proporcionándole un sustrato que garantice su
rendimiento. Esto se hará con azucares como la fructosa, la maltosa, lactosa y
la glucosa en tres horas de laboratorio calculando la absorbancia encada0,5
horas de la práctica así de esta manera gráficamente distinguiremos las
diferencias entre estos azucares.
JUSTIFICACION
La importancia del conocer el
metabolismo de los microorganismos promisorios ó de interés industrial tiene un
interés no solo biológico sino también científico.
Esto se debe
ya que el metabolismo consiste de un gran número de reacciones químicas
destinadas a transformar las moléculas nutritivas en elementos que
posteriormente serán utilizados para la síntesis de los componentes
estructurales; como pueden ser las proteínas. Otra parte importante del
metabolismo es la de transformar y conservar la energía que está contenida en
una reacción química en algún proceso que requiera de energía, como puede ser
el trabajo o el movimiento.
Nos interesa
la transformación de moléculas nutritivas, la conservación de energía y para
esto hay que estudiar y conocer el metabolismo de diferentes microorganismos.
REVISIÓN
BIBLIOGRÁFICA
Los seres vivos compartimos
los mismos tipos de átomos y moléculas básicos que nos dan diversidad de
estructuras y funcionamiento. Formados todos por combinaciones de ciertos
elementos comunes: carbono, hidrógeno, oxígeno, nitrógeno, fósforo y azufre;
precisamente los mismos que conforman aminoácidos y ácidos nucleicos. Estos
fundamentos físico químicos son las que evidencian la delgada línea divisoria
entre organismos sencillos y aquellos que consideramos complejos, el punto de
partida y la columna vertebral conceptual de la biotecnología. En el nivel
molecular, todo organismo vivo funciona esencialmente de la misma manera, sea
que se trate de un ser humano, un pez, una planta o una bacteria.
Los ácidos nucleicos son
llamados muy acertadamente “moléculas de la vida”, principalmente el ADN,
aunque los bioquímicos evolucionistas están casi todos de acuerdo en que en la
biosfera primitiva de hace 3500 a 3000 millones de años, fue precedida por un
mundo donde el “protagonista” fue realmente el ARN. Tomándose en cuenta que,
según estimaciones más recientes, la Tierra se formó como tal, hace unos 4500
millones de años.
Por
su parte, las proteínas representan una clase muy importante de moléculas,
porque son un constituyente fundamental de la materia viva y desempeñan una
gama amplia de funciones en los organismos vivos. Algunas son estructurales,
como las que forman las membranas celulares; otras, son reguladoras de procesos
biológicos, como las hormonas de naturaleza proteica; algunas son catalíticas,
como las enzimas que intervienen y facilitan las reacciones bioquímicas
fundamentales; existen aquellas que actúan como transportadoras de otros
compuestos y elementos esenciales, como la hemoglobina; otras son “defensivas”
como los casos de las inmunoglobulinas. En fin, se puede afirmar que las
proteínas son los pedestales funcionales y estructurales, convirtiéndose en los
responsables de casi todas las propiedades distintivas de los seres vivos. En Colombia, el arroz es el sustrato más
utilizado para la producción de biopreparados de Trichoderma sp. A partir de procesos de
fermentación artesanal e industrial. En la actualidad la empresa Sanatrade S.A.
elabora un producto llamado Tricho-D el cual tiene como ingrediente activo al
hongo Trichoderma harzianum, conocido como un
bio-regulador y antagonista natural de los fitopatógenos, este producto es
utilizado en Colombia en investigaciones para la protección de zocas del café
frente al ataque de Cerotocystis fimbrata. (Castro y Rivillas, 2003).
La
utilización de otro tipo de sustratos naturales para la producción de esporas
de Trichoderma sp. ha sido poco estudiada en el país
sólo empresas como Natural Control ubicada en la Ceja, Antioquia y Laverlam
S.A., en Cali, producen toneladas de estos biopreparados utilizando arroz como
sustrato base para el desarrollo y esporulación del hongo, trabajos realizados
por Fernández y Vega (2001), probaron la eficiencia y viabilidad de la
producción de esporas de Trichoderma sp. con subproductos de la industria
azucarera de Cuba, con soportes sólidos como materiales celulósicos, atendiendo
a la alta capacidad celulítica de este hongo.
La
utilización de subproductos agrícolas con altos contenidos celulósicos plantea
la posibilidad de reemplazar los sustratos utilizados como el arroz y el trigo,
los cuales actualmente encuentran limitado su utilización por los altos costos.
Así mismo, existen semillas de árboles con alto contenido de nutrientes que
pueden ser utilizadas para enriquecer los sustratos, como es el caso de las
semillas del árbol del pan (Artocarpus incisa), es una especie
perteneciente al género de los Artocarpus, dentro de la tribu de las
Artocarpeae, de la familia de las Moraceae con cientos de variedades de árboles
distribuidas en zonas tropicales de Asia y Suramérica. Las semillas de los
frutos del pan producidas abundantemente por el árbol son muy nutritivas. Son
ricas en azucares contienen entre un 20 y 37% de carbohidratos, calcio, hierro,
fósforo y niacina, y en vitaminas C y B1.
METODOLOGÍA
|
Obtener caldo
estéril de 5.000.000ug/l
|
|
Del caldo estéril
obtener solución estándar de 150ug/l
|
|
Obtener
soluciones de
|
|
100ug/l
|
|
50ug/l
|
|
25ug/l
|
|
Tomar datos de
absorbancia cada 0,5 horas por 3 horas
|
|
Graficar y
registrar
|
RESULTADOS
Tabla N°1 Resultado De Absorbancia Vs Tiempo
|
Tiempo
|
0
|
0,5
|
1
|
1,5
|
2
|
2,5
|
3
|
|||||||||||||||||||||
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
100
|
50
|
25
|
||||||||
|
Fructosa
|
0,01
|
0,03
|
0,09
|
0,003
|
0,001
|
0,001
|
0
|
0,002
|
0,001
|
0,001
|
0,003
|
0,002
|
0,001
|
0,002
|
0,005
|
0,005
|
0,004
|
0,001
|
0,001
|
0
|
0
|
|||||||
|
Lactosa
|
0,003
|
0,004
|
0,002
|
0
|
0,001
|
0,004
|
0,004
|
0,003
|
0,002
|
0,005
|
0
|
0
|
0,002
|
0,007
|
0,001
|
0,003
|
0,009
|
0,001
|
0,002
|
0,009
|
0,001
|
|||||||
|
Maltosa
|
0,001
|
0
|
0,002
|
0,003
|
0,002
|
0,001
|
0,008
|
0,003
|
0,001
|
0,007
|
0,003
|
0,005
|
0,006
|
0
|
0,004
|
0,002
|
0
|
0,002
|
0
|
0
|
0,002
|
|||||||
|
Glucosa
|
0
|
0,002
|
0,03
|
0,001
|
0
|
0,001
|
0
|
0,004
|
0001
|
0,001
|
0
|
0,006
|
0,005
|
0,004
|
0,001
|
0,001
|
0,004
|
0,01
|
0,001
|
0,004
|
0,001
|
|||||||
|
AZUCAR
|
1 LEC
|
2 LEC
|
|
|
FRUCTOSA
|
0
|
8,4
|
|
|
LACTOSA
|
0,2
|
3,2
|
|
|
MALTOSA
|
0,3
|
1
|
|
|
GLUCOSA
|
0
|
0
|
Tabla N°2 Grados Brix
Graficas
Grafica N°1 Fructosa
Grafica N°2 lactosa
Grafica N°3 Maltosa
Grafica N°4 glucosa
ANÁLISIS
DE RESULTADOS
Tanto la fructosa como la glucosa tuvieron comportamientos similares en
todos los tiempos sin embargo la maltosa es el azúcar que más cumple con el
metabolismo ya que como se ve en la gráfica cumple con las fases de
crecimiento. De esto se observa que la fructosa
y glucosa tienen un metabolismo mejor en esta clase de cultivos, es decir
cumple con lo solicitado.
Con los datos obtenidos en el
espectrofotómetro, se puede deducir que la absorbancia aumenta con la
concentración de las soluciones y la distancia que recorre el rayo de luz, debido a que hay mayor cantidad de analito (
mayor cantidad de moléculas que adsorben energía para excitarse). Las cuales
toman esta energía del rayo de luz, disminuyendo la intensidad de la radiación, por lo que la transmitancia disminuye al aumentar
la concentración.
CONCLUSIONES
En el estudio realizado se evidencia que el tiempo es un
factor determinante durante la cuantificación de azucares, ya que durante las
pruebas se obtuvo una eliminación comparación con cada uno de ellos y en
diferentes tiempos cada absorbancia es diferente; es decir A mayor concentración en las soluciones, mayor será
la cantidad de soluto adsorbida cuando se mantiene la cantidad de adsorbente
constante.
BIBLIOGRAFIA
1. Chaplin MF (1986) Monosaccharides. En Chaplin MF,
Kennedy JF (eds.): “Carbohydrate
Analysis: A Practical Approach”. IRL Press (Oxford, England)
pp. 1-36. Descripción muy simple pero bastante completa de los principales
métodos de análisis de monosacáridos
2. A.O.A.C. Official Methods of Analysis. 1980. Horwitz W. (ed). Ed. 13th.
Washington, U.S.A.
3. Ting, S.V. 1956.
Rapid Colorimetric Methods for Simultaneous Determination of Total
Reducing Sugars and Fructose in Citrus Juices. Agric. Food Chem. Vol. 4(3) 263-266.
Aporte de Danery Eliana Avila Garzòn
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